Лазер-индуцированная аутофлуоресценция для оценки метаболизма и гемодинамики головного мозга

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

В статье представлены результаты экспериментального исследования возможности применения метода лазерно-флуоресцентного анализа для оценки метаболизма ткани головного мозга in situ при сохранении целостности твердой мозговой оболочки. На модели аноксии и острой ишемии головного мозга продемонстрирована информативность метода регистрации флуоресценции восстановленных пиридиновых нуклеотидов и оценки индекса жизнеспособности, учитывающего конверсию окси- и дезоксиформ гемоглобина. Изучены некоторые патобиохимические механизмы изменения пула пиридиновых нуклеотидов при аноксии и ишемии.

Об авторах

A. Б. Салмина

НИИ молекулярной медицины и патобиохимии

Email: allasalmina@mail.ru
Россия, Красноярск

В. В. Салмин

ИИФиРЭ ФГАОУ СФУ

Email: allasalmina@mail.ru
Россия, Красноярск

O. В. Фролова

ГОУ ВПО КрасГМУ им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого

Email: allasalmina@mail.ru
Россия, Красноярск

Д. И. Лалетин

ГОУ ВПО КрасГМУ им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого

Email: allasalmina@mail.ru
Россия, Красноярск

M. A. Фурсов

ГОУ ВПО КрасГМУ им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого

Email: allasalmina@mail.ru
Россия, Красноярск

Д. П. Скомороха

ИИФиРЭ ФГАОУ СФУ

Email: allasalmina@mail.ru
Россия, Красноярск

A. A. Фурсов

ГОУ ВПО КрасГМУ им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого

Email: allasalmina@mail.ru
Россия, Красноярск

M. A. Кондрашов

ГОУ ВПО КрасГМУ им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого

Email: allasalmina@mail.ru
Россия, Красноярск

Н. Н. Медведева

ГОУ ВПО КрасГМУ им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого

Email: allasalmina@mail.ru
Россия, Красноярск

Н. A. Малиновская

ГОУ ВПО КрасГМУ им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого

Email: allasalmina@mail.ru
Россия, Красноярск

Н. С. Манторова

ГОУ ВПО КрасГМУ им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого

Автор, ответственный за переписку.
Email: allasalmina@mail.ru
Россия, Красноярск

Список литературы

  1. Попов Ю.А., Салмин В.В., Салмина А.Б. и соавт. Спектрофлуориметрический метод оценки ишемии миокарда. Вестник КрасГУ, серия Физико-математические науки 2005; 4: 89–92.
  2. Салмин В.В., Салмина А.Б., Фурсов А.А. и соавт. Использование метода лазерно-флуоресцентной оптической биопсии миокарда для оценки ишемического повреждения. Журнал СФУ 2010 (в печати).
  3. Aubert A., Costalat R. Interaction between astrocytes and neurons studied using a mathematical model of compartmentalized energy metabolism. J. Cerebr. Blood Flow Metab. 2005; 25: 1476–1490.
  4. Aubert A., Costalat R., Magistretti P.J., Pellerin L. Brain lactate kinetics: modeling evidence for neuronal lactate uptake upon activation. Proc. Natl. Acad. Sci. 2005; 102 (45): 16448–16453.
  5. Aubert A., Pellerin L., Magistretti P.J., Costalat R. A coherent neurobiological framework for functional neuroimaging provided by a model integrating compartmentalized energy metabolism. Proc. Natl. Acad. Sci. 2007; 104 (10): 4188–4193.
  6. Ciaume C., Koulakoff A., Roux L. et al. Astroglial networks: a step further in neuroglial and gliovascular interactions. Nature Rev. Neuroscience 2010; 11: 87–99.
  7. De Georgia M.A. Multimodal monitoring in neurocritical care. Cleveland Clin. J. Med. 2004; 71 (Suppl. 1): S16–17.
  8. Di Lisa F., Menabo R., Canton M. et al. Opening of the mitochondrial permeability transition pore causes depletion of mitochondrial and cytosolic NAD+and is a causative event in the death of myocytes in postischemic reperfusion of the heart. J. Biol. Chem. 2001; 276: 2571–2575.
  9. Fiskum G., Danilov C.A., Mehrabian Z. et al. Postischemic oxidative stress promotes mitochondrial metabolic failure in neurons and astrocytes. Ann. N.Y. Acad. Sci. 2008; 1147: 129–138.
  10. Foster K.A., Galeffi F., Gerich F.J. et al. Optical and pharmacological tools to investigate the role of mitochondria during oxidative stress and neurodegeneration. Progress in Neurobiol. 2006; 79: 136–171.
  11. Higashida H., Salmina A.B., Olovyannikova R.Ya., Hashii M. Cyclic ADP-ribose as a universal calcium signal molecule in the nervous system. Neurochem. Int. 2007; 51(2–4): 192–199.
  12. Higuchi T., Takeda Y., Hashimoto M. et al. Dynamic changes in cortical NADH fluorescence and direct current potential in rat focal ischemia: relationship between propagation of recurrent depolarization and growth of the ischemic core. J. Cerebr. Blood Flow Metab. 2002; 22 (1): 71–79.
  13. Ido Y., Chang K., Woolsey T.A., Williamson J.R. NADH: sensor of blood flow need in brain, muscle, and other tissues. FASEB J. 2001; 15: 1419–1421.
  14. Kahraman S., Fiskum G. Anoxia-induced changes in pyridine nucleotide redox state in cortical neurons and astrocytes. Neurochem. Res. 2007; 32 (4–5): 799–806.
  15. Kosterin P., Kim G.H., Muschol M. et al. Changes in FAD and NADH fluorescence in neurosecretory terminals are triggered by calcium entry and by ADP production. J. Membr. Biol. 2005; 208 (2): 113–124.
  16. Kulik A., Rodriguez R.A., Nathan H.J., Ruel M. Intraoperative neuromonitoring in cardiac surgical patients with severe cerebrovascular disease. Can. J. Anaesth. 2005; 52 (3): 335–336.
  17. Mayevsky A., Rogatsky G.G. Mitochondrial function in vivo evaluated by NADH fluorescence: from animal models to human studies. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2007; 292: C615–C640.
  18. Provorov A.S., Salmin V.V., Salmina A.B. et al. Pulsed gas lasers with longitudinal discharge and their application in medicine. Laser Physics. 2005; 15 (9): 1299–1302.
  19. Qui L., Zhao W., Sick T. Quantitative analysis of brain NADH in the presence of hemoglobin using microfiber spectrofluorometry: a pre-calibration approach. Computers in Biol. Med. 2005; 35: 583–601.
  20. Reinert K.C., Dunbar R.L., Gao W. et al. Flavoprotein autofluorescence imaging of neuronal activation in the cerebellar cortex in vivo. J. Neurophysiol. 2004; 92: 199–211.
  21. Rex A., Fink F. Applications of laser-induced fluorescence spectroscopy for the determination of NADH in experimental neuroscience. Laser Phys. Letts. 2006; 3 (9): 452–459.
  22. Steinbrink J., Liebert A., Wabnitz H. et al. Towards noninvasive molecular fluorescence imaging of the human brain. Neurodegenerative Dis. 2008; 5: 296–303.
  23. Taga G., Asakawa K., Hirasawa K. and Konishi Y. Hemodynamic responses to visual stimulation in occipital and frontal cortex of newborn infants: A near-infrared optical topography study. Early Human Development. 2003; 75 (Suppl.): S203–S210.
  24. Zhou L., Stanley W.C., Saidel G.M. et al. Regulation of lactate production at the onset of ischemia is independent of mitochondrial NADH/NAD+: insights from in silico studies. J. Physiol. 2005; 569.3: 925–937.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Salmina A.B., Salmin V.V., Frolova O.V., Laletin D.I., Fursov M.A., Skomorokha D.P., Fursov A.A., Kondrashov M.A., Medvedeva N.N., Malinovskaya N.A., Mantorova N.S., 2011

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77-83204 от 12.05.2022.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах